1.1.6 MUESTRAS OCULARES. Por vecindad estas muestras se estudian con las del tracto respiratorio superior. 1.1.6.1 EXUDADO CONJUNTIVAL Este tipo de muestras sirve para el diagnóstico de conjuntivitis de causa bacteriana. Estas son a menudo unilaterales. De todas maneras se solicita que se haga la toma de muestra de ambos sacos conjuntivales por separado, de manera de poder valorar la flora normal. Siempre que sea posible se realizará la toma de muestra en el Laboratorio de Microbiología. A. MATERIAL NECESARIO. - Hisopos con medio de transporte. - Suero fisiológico estéril. B. TECNICA. - Debe obtenerse la muestra antes de la instilación de los analgésicos locales, colirios o antibióticos. - Con un hisopo mojado en suero fisiológico frotar sobre la conjuntiva tarsal inferior y el fórnix de afuera hacia adentro. - Para la investigación de Chlamydia trachomatis, everter el párpado y frotar con una torunda la superficie conjuntival con hisopo provisto por el laboratorio para investigación de Chlamydias. C. NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN. Deberá utlizarse un hisopo para cada ojo. D. TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN. El transporte deberá ser inmediato. Cuando no sea posible, se utilizarán hisopos con medio de transporte tipo Stuart o Amies, que se mantendrán a temperatura ambiente. Para Chlamydia se utilizará un medio de transporte específico que depende de cada laboratorio. E. OBSERVACIONES. Los cultivos de conjuntiva preoperatorios no son útiles. El número y tipo de microorganismos de la conjuntiva normal varía diariamente, por lo que estas muestras no son válidas, excepto en el caso de signos inflamatorios a nivel ocular. 1.1.6.2 RASPADOS CORNEALES. Es un procedimiento médico. La toma de muestra la realizará un Oftalmólogo en el Laboratorio de Microbiología en coordinación con un Microbiólogo. Si esto no es posible se avisará previamente al Servicio de Microbiología que desplazará al personal y/o material necesario para ello. A. MATERIAL NECESARIO. - Espátula de platino flexible o ansa bacteriológica nueva o descartable. - Anestésico local. - Portaobjetos limpios con círculos marcados. - Caja de Koplin con metanol al 95%. B. TECNICA. - Instilar uno o dos gotas de anestésico. - Realizar el raspado de múltiples áreas de ulceración con la espátula de Kimura . - El material obtenido se siembra en lo medios provistos por el laboratorio. - Parte del material se colocará en el circulo de un portaobjetos limpio. - Fijar el portaobjetos en Metanol durante 5-10 minutos. C. NÚMERO DE MUESTRAS Y/O VOLUMEN. Mínimo 1 portaobjetos y medios de cultivos con varias improntas corneales. D. TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN. Una vez fijados los portaobjetos no requieren medidas especiales para su transporte y conservación. Los medios se transportarán en forma inmediata al Laboratorio de Microbiología.
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